細胞培養常用器材與試劑配制
器材與試劑
干粉型培養基、胰蛋白酶，青霉素、鏈霉素. 純凈水系統、電子天平、PH計、磁力攪拌器等
具體步驟
1. 水：
細胞培養 用水必須非常純凈，不含有離子和其他的雜質。需要用新鮮的雙蒸水、三蒸水或純凈水.
2. PBS (也可用于其它BSS，如：Hanks，D-Hanks液的配制)：
主要用于免疫 組化 染色時組織或細胞的漂洗
溶解定容：將藥品(NaCl 8.0g，KCl 0.2g，Na2HPO4?H2O 1.56g，KH2PO4 0. 2g )倒入盛有雙蒸水的燒杯中，玻璃棒攪動，充分溶解，然后把溶液倒入容量瓶中準確定容至1000ml，搖勻即成新配制的PBS溶液。用HCl或NaOH調PH到7.4。
移入溶液瓶內待消毒：將PBS倒入溶液瓶(大的吊針瓶)內，蓋上膠帽，并插上針頭放入高壓鍋內8磅消毒20分鐘。注意高壓消毒后要用滅菌蒸餾水補充蒸發掉的水份。
3. 胰蛋白酶溶液：
胰蛋白酶的作用是使細胞間的蛋白質水解從而使細胞離散。不同的組織或者細胞對胰酶的作用反應不一樣。胰酶分散細胞的活性還與其濃度、溫度和作用時間有關，在pH為8.0、溫度為37℃時，胰酶溶液的作用能力最強。使用胰酶時，應把握好濃度、溫度和時間，以免消化過度造成細胞損傷。因Ca2+、Mg2+和血清、蛋白質克降低胰酶的活性，所以配制胰酶溶液時應選用不含Ca2+、Mg2+的BSS，如：D-Hanks液。終止消化時，可用含有血清培養液或者胰酶抑制劑終止胰酶對細胞的作用 。
稱取胰蛋白酶：按胰蛋白酶液濃度為0.25%，用電子天平準確稱取粉劑溶入小燒杯中的雙蒸水(若用雙蒸水需要調PH到7.2左右)或PBS(D-hanks)液中。攪拌混勻，置于4℃內過夜。
用注射濾器 抽濾消毒：配好的胰酶溶液要在超凈臺內用注射濾器 (0.22微米微孔濾膜)抽濾除菌。然后分裝成小瓶于-20℃保存以備使用。
4. 0.05%胰蛋白酶-0.02%EDTA 溶液
稱取胰蛋白酶粉末(1：250) 0.05g，EDTA 0.02g，加入PBSA 100ml，0.22um微孔濾膜過濾除菌，分裝，于-20℃保存。
5. 青、鏈霉素溶液：
所用純凈水(雙蒸水)需要15磅高壓20分鐘滅菌。 具體操作均在超凈臺內完成。青霉素是80萬單位/瓶，用注射器加4ml滅菌雙蒸水。鏈霉素是100萬單位/瓶，加5ml滅菌雙蒸水，即每毫升各為20萬單位。 分裝于-20℃保存。使用時溶入培養液中，使青鏈霉素的濃度最終為100單位/ml。
6. RPMI1640：
溶解、調PH值、定容：先將培養基粉劑加入培養液體積2/3的雙蒸水中,并用雙蒸水沖洗包裝袋2-3次(沖洗液一并加入培養基中),充分攪拌至粉劑全部溶解,并按照包裝說明添加一定的藥品.然后用注射器向培養基中加入配制好的青鏈霉素液各0.5ml, 使青鏈霉素的濃度最終各為100單位/ml。然后用二氧化碳或碳酸氫鈉調PH到7.2左右。最后定容至1000ml，搖勻。
安裝蔡式濾器：安裝時先裝好支架，按規定放好濾膜，用螺絲將不銹鋼濾器和支架連接好。然后卸下支架腿分別用布包好待消毒。
抽濾：配制好的培養液通常用濾器過濾除菌。通常用蔡式濾器在超凈工作臺內過濾。
分裝：將過濾好的培養液分裝入小瓶內置于4℃冰箱內待用。
使用前要向100ml培養液中加入1ml谷氨酰胺溶液(4℃時兩周有效)。
7. 血清的滅活：
細胞培養常用的是小牛血清，新買來的血清要在56℃水浴中滅活30分鐘后，再經過抽濾方可加入培養基中使用。
8. HEPES溶液：
HEPES的化學全稱位羥乙基呱嗪乙硫磺酸(N’-a-hydroxythylpiperazine-N’- ethanesulfanic acid )。對細胞無毒性作用。它是一種氫離子緩沖劑，能較長時間控制恒定的pH范圍。使用終濃度為10-50mmol/L，一般培養液內含20mmol/LHEPES即可達到緩沖能力。
1mol/L HEPE緩沖液配制方法如下：
準確稱取HEPTS 238.3g，加入新鮮三蒸水定容至1L。0.22um微孔濾膜過濾除菌，分裝后4℃保存。
注意：因為現在市售HEPES為約10g包裝的小瓶，所以可根據實際情況靈活配制，但是要保證培養液內HEPES的終濃度仍然為20m mol/L 。如：稱取4.766克HEPES溶于20ml三蒸水中，過濾除菌后可完全(20ml)加入1L培養液中，或者每100ml培養液中加入2ml即可。
9. 谷氨酰胺：
合成培養基中都含有較大量的谷氨酰胺，其作用非常重要，細胞需要谷氨酰胺合成核酸和蛋白質，谷氨酰胺缺乏要導致細胞生長不良甚至死亡。在配制各種培養液中都應該補加一定量的谷氨酰胺。由于谷氨酰胺在溶液中很不穩定，4℃下放置1周可分解50%，故應單獨配制，置于-20℃冰箱中保存，用前加入培養液。加有谷氨酰胺的培養液在4℃冰箱中儲存2周以上時，應重新加入原來的谷氨酰胺。
一般培養液中谷氨酰胺的含量為1～4mmol/L。可以配制200mmol/L谷氨酰胺液貯存，用時加入培養液。配制方法為，谷氨酰胺2.922g溶于三蒸水加至100ml即配成200mmol/L的溶液，充分攪拌溶解后，過濾除菌，分裝小瓶，-20℃保存，使用時可向100ml培養液中加入1ml谷氨酰胺溶液。
10. 肝素溶液的配制：
含有肝素的培養液可以使內皮細胞純度提高，肝素加入全培養液中最終濃度為50ug/ml。因為現在市售的多為肝素鈉，包裝為約為0.56克/瓶，配制時，可將其溶于100ml三蒸水中，定容，過夜，然后過濾除菌，分裝小瓶，保存溫度為??℃ 。使用時，向100ml培養液中加入1ml(精確可加入0.9ml)即可。
11. Ⅰ型膠原酶：
0.1%Ⅰ型膠原酶溶液同胰蛋白酶一樣配制和消毒滅菌。注意：因為Ⅰ型膠原酶分子 顆粒比胰酶大，不容易過濾，因此可以用蔡式濾器過濾除菌。分裝入10ml小瓶-20℃保存。
12. 明膠溶液：
因為明膠難于過濾，所以配制0.1%明膠溶液必須用無菌的PBS配制。所以制備過程中必須要注意無菌操作。首要的問題是如何無菌準確稱量0.1克(配成100ml溶液)—即解決無菌分裝藥品的問題。其次要注意即使是01.的溶液，明膠也難溶，因此要充分搖勻，過夜放置，然后無菌操作分裝入50ml小瓶中，4℃保存。
13. Hanks液：
稱取KH2PO4 0.06g，Nacl 8.0g，NaHCO3 0.35g，KCl 0.4g，葡萄糖1.0g，Na2HPO4.H2O 0.06g，加H2O至 1000ml
注：Hanks液可以高壓滅菌。分裝于4℃下保存。
14. D-hanks液：
1液：NaCL:8.00g/L，KCL : 0.04g/L，Na2HPO4.2H2O:0.06g/L，KH2PO4:0.06g/L，配500毫升;
2液：NaHCO3：0.35g/L，配100毫升;
3液：酚紅：0.02g，用數滴NaHCO3溶解酚紅
將2，3液移入1液中。定容到1000毫升 PH值是7.4左右。分裝于4℃下保存。
15. Giemsa染液：
稱Giemsa粉末0.5克，加幾滴甘油研磨，再加入甘油(使加入的甘油總量為33ml)。56℃中保溫90~120分鐘。加入33ml甲醇，置棕色瓶中保存，此為Giemsa原液。 使用時按要求用PBS稀釋。一般稀釋10倍。
