什么是MTT，什么是MTT法

mtt 原理

MTT全稱為3-(4,5)-dimethylthiahiazo (-z-y1)-3,5-di- phenytetrazoliumromide，漢語化學名為 3-(4，5-二甲基噻唑-2)-2，5-二苯基四氮唑溴鹽，商品名：噻唑藍 。是一種黃顏色的染料。

MTT比色法，是一種檢測細胞存活和生長的方法。其檢測原理為活細胞線粒體中的琥珀酸脫氫酶能使外源性MTT還原為水不溶性的藍紫色結晶甲瓚(Formazan)并沉積在細胞中，而死細胞無此功能。二甲基亞砜(DMSO )能溶解細胞中的甲瓚，用酶聯免疫檢測儀在490nm波長處測定其光吸收值，可間接反映活細胞數量。

在一定細胞數范圍內，MTT結晶形成的量與細胞數成正比。該方法已廣泛用于一些生物活性因子的活性檢測、大規模的抗腫瘤藥物篩選、細胞毒性試驗以及腫瘤放射敏感性測定等。它的特點是靈敏度高、經濟。

缺點：由于MTT經還原所產生的甲瓚產物不溶于水，需被溶解后才能檢測。這不僅使工作量增加，也會對實驗結果的準確性產生影響，而且溶解甲的有機溶劑對實驗者也有損害。

MTT 溶液的配制方法

通常，此法中的MTT 濃度為5mg/ml。因此，可以稱取MTT 0.5克，溶于100 ml的磷酸緩沖液(PBS)或無酚紅的培養基中，用0.22μm濾膜過濾以除去溶液里的細菌，放4℃ 避光保存即可。在配制和保存的過程中，容器最好用鋁箔紙包住。實驗的時候我一般關閉超凈臺上的日光燈來避光，覺得這樣比較好。

需要注意的是，MTT法只能用來檢測細胞相對數和相對活力，但不能測定細胞絕對數。在用酶標儀檢測結果的時候，為了保證實驗結果的線性，MTT 吸光度最好在0-0.7 范圍內。

MTT一般最好現用現配，過濾后4oC避光保存兩周內有效，或配制成5mg/ml保存在-20度長期保存，避免反復凍融，最好小劑量分裝，用避光袋或是黑紙、錫箔紙包住避光以免分解。我一般都把MTT粉分裝在EP管里，用的時候現配，直接往培養板中加，沒必要一下子配那么多,尤其當MTT變為灰綠色時就絕對不能再用了。

MTT有致癌性，用的時候小心,有條件最好帶那種透明的簿膜手套.配成的MTT需要無菌，MTT對菌很敏感;往96孔板加時不避光也沒有關系，畢竟時間較短，或者你不放心的時候可以把操作臺上的照明燈關掉.

配制MTT時用PBS(ph=7.4)溶解。PBS配方：Nacl 8g + Kcl 0.2g + Na2HPO4 1.44g + KH2PO4 0.24g調pH 7.4,定容1L。

普通MTT法實驗步驟：

1：接種細胞：用含10%胎小牛血清得培養液配成單個細胞懸液，以每孔1000-10000個細胞接種到96孔板，每孔體積200ul.

2: 培養細胞：同一般培養條件，培養3-5天(可根據試驗目的和要求決定培養時間)。

3：呈色：培養3-5天后，每孔加MTT溶液(5mg/ml用PBS配制，pH=7.4)20ul.繼續孵育4 h，

終止培養，小心吸棄孔內培養上清液，對于懸浮細胞需要離心后再吸棄孔內培養上清液。每孔加150ul DMSO，振蕩10min，使結晶物充分融解。

4：比色：選擇490nm波長，在酶聯免疫監測儀上測定各孔光吸收值，記錄結果，以時間為橫坐標，吸光值為縱坐標繪制細胞生長曲線。

藥物MTT法實驗步驟

貼壁細胞：

1: 收集對數期細胞，調整細胞懸液濃度，每孔加入100ul,鋪板使待測細胞調密度 1000-10000 孔，(邊緣孔用無菌PBS填充)。

2: 5%CO2，37℃孵育，至細胞單層鋪滿孔底(96孔平底板),加入濃度梯度的藥物,原則上，細胞貼壁后即可加藥，或兩小時，或半天時間，但我們常在前一天下午鋪板，次日上午加藥.一般5-7個梯度,每孔100ul,設3-5個復孔.建議設5個，否則難以反應真實情況

3: 5%CO2，37℃孵育16-48小時，倒置顯微鏡下觀察。

4: 每孔加入20ulMTT溶液(5mg/ml，即0.5%MTT)，繼續培養4h。若藥物與MTT能夠反應，可先離心后棄去培養液，小心用PBS沖2-3遍后，再加入含MTT的培養液。

5: 終止培養，小心吸去孔內培養液。

6: 每孔加入150ul二甲基亞砜，置搖床上低速振蕩10min，使結晶物充分溶解。在酶聯免疫檢測儀OD490nm處測量各孔的吸光值。

7: 同時設置調零孔(培養基、MTT、二甲基亞砜)，對照孔(細胞、相同濃度的藥物溶解介質、培養液、MTT、二甲基亞砜)。

懸浮細胞：

1: 收集對數期細胞，調節細胞懸液濃度1×106/ml，按次序將：

①補足的1640(無血清)培養基40ul ;

②加Actinomycin D(有毒性)10ul用培養液稀釋 (儲存液100mg/ml，需預試尋找最佳稀釋度，1:10-1:20);

③需檢測物10ul;

④細胞懸液50ul(即5×104cell/孔)，共100ul加入到96孔板(邊緣孔用無菌水填充)。每板設對照(加100ml 1640)2: 置37℃，5%CO2孵育16-48小時，倒置顯微鏡下觀察。

3: 每孔加入10 ul MTT溶液(5 mg/ml，即0.5%MTT)，繼續培養4 h。(懸浮細胞推薦使用WST-1，培養4 h后可跳過步驟4)，直接酶聯免疫檢測儀OD570nm(630nm校準)測量各孔的吸光值)

4、離心(1000轉x10min)，小心吸掉上清，每孔加入100 ul二甲基亞砜，置搖床上低速振蕩10 min，使結晶物充分溶解。在酶聯免疫檢測儀OD570nm(630nm校準)測量各孔的吸光值。

5、同時設置調零孔(培養基、MTT、二甲基亞砜)，對照孔(細胞、相同濃度的藥物溶解介質、培養液、MTT、二甲基亞砜)，每組設定3復孔。

注意事項：

(1) 選擇適當得細胞接種濃度。

(2) 避免血清干擾：一般選小于10%的胎牛血清的培養液進行試驗。在呈色后盡量吸盡孔內殘余培養液。

(3) 設空白對照：與試驗平行不加細胞只加培養液的空白對照。其他試驗步驟保持一致，最后比色以空白調零。

(4) MTT實驗吸光度最后要在0-0.7之間，超出這個范圍就不是直線關系。

(5) 用96孔板培養細胞做MTT測細胞活力,應該加多少1640培養基,多少MTT和DMSO合適根據書上說的加200ul1640,20ulMTT,150ulDMSO 加DMSO之前要盡量去掉培養液，便于DMSO溶解甲臜顆粒進行比色測定

(6) 一般每孔4000個細胞為宜，既細胞濃度在20000個/ml，MTT加20ul，作用四小時后洗掉上清液，注意不要將甲瓉洗掉，然后每孔加150ul DMSO，在脫色搖床上振蕩10分鐘，然后測吸光值。

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