細胞計數和臺盼藍染色
血球計數板每一大方格長為1mm ,寬為1mm ,高為0.1mm ,體積為0.1mm3 ,可容納的溶液是0.1?l ,那么每ml 溶液中所含細胞數即是視野中每一大方格中數出的細胞數的10000 倍。
實驗步驟
(一)準備計數板:用酒精清潔計數板和蓋玻片,然后用吸水紙輕輕擦干。
(二)制備細胞懸液:用胰蛋白酶消化單層培養細胞或收集懸浮培養細胞,制成單個細胞懸液。要求細胞密度不低于104 /ml ,若細胞數很少,應將懸液離心(1000rpm ,2min ),重懸浮于少量培養液中。
(三)加樣:將蓋玻片蓋在計數板兩槽中間。用吸管輕輕吹打細胞懸液,吸取少量細胞懸液,在計數板上蓋玻片一側加細胞懸液,加樣量不要溢出蓋玻片,也不要過少或帶氣泡。否則要將計數板和蓋玻片擦干凈重新加樣。
(四)計數:在顯微鏡下,用10 ×物鏡觀察計數板四角大方格中的細胞數,細胞壓中線時,只計左側和上方者,不計右側和下方者。
(五)計算:將計算結果代入下式,得出細胞密度。
細胞數/ 毫升原液= (4 大格細胞數之和/4 )×104 ×稀釋倍數
注意事項
(一)消化單層細胞時,務求細胞分散良好,制成單個細胞懸液,否則會影響細胞計數結果。
(二)取樣計數前,應充分混勻細胞懸液。在連續取樣計數時,特別應該注意這一點,否則前后計數結果會有很大誤差。
(三)鏡下計數時,遇到2 個以上細胞組成的細胞團,應按單個細胞計算。如細胞團占10% 以上,說明消化不充分;或細胞數少于200 個/10mm2 或多于500 個/10mm2 時,說明稀釋不當,需重制備細胞懸液、計數。
培養細胞活力的檢測
臺盼藍排斥實驗
1.制備單個細胞懸液,適當稀釋;
2.向細胞懸液中加入0.4% 臺盼藍溶液,使臺盼藍終濃度為0.04% ;
3 .在三分鐘內用血球計數板分別計數活細胞和死細胞,死細胞被染成淡藍色。
注意事項:在三分鐘內完成死細胞計數,否則部分活細胞也會被染色,影響實驗的準確性。
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