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自然殺傷細胞(NK)和淋巴因子激活殺傷細胞(LAK)的殺傷功能
發布日期:2024-09-08 09:27:32


自然殺傷細胞(NK)和淋巴因子激活殺傷細胞(LAK)的殺傷功能


原理

NK細胞存在于人或動物外周血、脾臟、淋巴結和骨髓中,能殺傷某些腫瘤細胞、病毒感染靶細胞,無需抗原或有絲分裂原刺激,亦不依賴抗體或補體,在機體殺傷腫瘤、防御感染及免疫調節中發揮重要作用。

  
LAK是NK或T細胞在體外高劑量IL-2誘導下,獲得能殺傷NK抵抗的腫瘤細胞的功能,在過繼免疫治療腫瘤中已得到廣泛的應用。

  
通過將同位素51Cr摻入到NK的靶細胞K562(紅白細胞白血病細胞)或LAK的靶細胞LiBr(黑色素瘤細胞),按一定細胞比例與效應細胞(NK或LAK)孵育4 小時,根據細胞上清中靶細胞被殺傷后所釋放的51Cr水平計算出殺傷細胞的殺傷活性。


材料與儀器

K562 LiBr
3H-TdR 51Cr FCS RPMI1640 rHu IL-2
培養瓶 培養板 CO2孵箱 液閃儀 計數儀


步驟

一、效應細胞的制備

  
NK功能效應細胞可取靜止的PBMC,或經不同細胞因子誘導的PBMC。

  
LAK功能的效應細胞通常將PBMC或腫瘤浸潤淋巴細胞(TIL)或體液(癌性胸腹水)中純化的淋巴細胞(1×106 /ml)在含有高劑量IL-2(200~1000 μ/ml)的10 %FCS RPMI1640 誘導2~5 天而成。

  
二、殺傷試驗

主要有4 h 51Cr釋放法和3H-TdR釋放法,前者要求51Cr質量好,同位素半衰期較短,操作所需時間短;后者需要無菌操作,所需時間較長。

  
1.  51Cr 4 小時釋放試驗

         
(1)收獲處于對數生長期的靶細胞(K562,LiBr等)洗滌后調整細胞濃度為2×106 /ml

                  

(2)取1×106細胞(0.5 ml),加Na251CrO4 100 μci,37 ℃孵育2~3 h,每15 min輕輕振搖一次

   

(3)用10 %FCS RPMI1640洗滌3 次,每次800 rpm,5 min

     

(4)重懸細胞濃度1×105 /ml

                   

(5)96 孔V型或U型培養板中,每孔加100 μl(1×104細胞),每份3 個復孔


(6)每孔加入100 μl不同細胞濃度的效應細胞,最大釋放組加入100 μl,1 %TritonX-100;自然釋放組加100 μl完全培養基

                  

(7)200 g 離心1 min,37 ℃、CO2孵箱 4 h,200 g 離心1 min

                  

(8)每孔取出100 μl上清,γ計數儀上測定cpm值

  
(9)計算

 

          實驗組cpm-自然釋放cpm

特異性殺傷率(%)=─────────────

          最大釋放cpm-自然釋放cpm

  
2.  3H-TdR釋放試驗

        
(1)收獲處于對數生長期的靶細胞(K562、LiBr等)洗滌后調整細胞濃度為2×106 /ml,加3H-TdR 20 μci

                       

(2)37 ℃孵育2~3 h

              

(3)用10 %FCS RPMI1640洗滌3 次,每次800 rpm,5 min 調整細胞濃度為1×105 /ml

        

(4)96 孔U型或平底培養板中,每孔加100 μl(1×104細胞),每份3個復孔

                    

(5)每孔加入100 μl不同細胞濃度的效應細胞,最大釋放組加100 μl 1%TritonX-100,自然釋放組加100 μl完全培養基

                   

(6)CO2孵箱培養18~24 h

                    

(7)每孔吸出100 μl上清,加入胰蛋白酶(終濃度0.15 %)和DNA酶(終濃度為0.0125 %)

                    

(8)繼續孵育30 min

                    

(9)用細胞收集儀收獲于玻璃纖維紙上

                   

(10)干燥后,移入液閃瓶中,加入1 ml閃爍液,β液閃儀中測cpm值


(11)計算
 

            實驗組cpm

特異性釋放率(%)=(1- ────── )×100%

            對照組cpm


注意事項

1.  每次試驗最好取3~4 個不同效應細胞/靶細胞比例,常用效靶比例為100∶1,50∶1,25∶1,12.5∶1。

  
2.  誘導LAK細胞過程中要注意無菌操作。

  
3.  避免同位素污染。

  
4.  根據實驗需要,可采用純化的NK細胞作為效應細胞,用Percoll不連續密度梯度離心純化NK細胞。

 

(1)1個溶解單位(Lytic unit,LU)為一定效應細胞30 %溶解(殺傷)5×103靶細胞(K562)的水平。


(2)如需進一步純化LGL,可通過除去具有高親和性羊紅細胞受體細胞(T細胞),因為NK細胞只具有低親和性的綿羊紅細胞受體(ER)。具體方法是將Percoll分離的位于第2梯度的細胞洗滌后調整細胞濃度為5×106 /ml,移入試管,加入2 mlFCS和2 ml 1×108 /ml SRBC,100 g離心5 min,29 ℃孵育1 h,輕輕重懸細胞,疊加于3 ml Ficoll上,400 g室溫下離心30 min界面不形成花環的細胞即為LGL,純度可>90%。

  
(3)在用PBMC作為效應細胞進行NK活性測定時,如想除去PBMC懸液中混雜的紅細胞,可用蒸餾水低滲的方法除去紅細胞,而不用NH4Cl方法,因為后者可降低NK功能。

  
(4)在小鼠NK實驗中必須注意小鼠的品系和周齡,不同小鼠系NK活性有明顯的差別

 

(5)3周以內或超過3個月以上小鼠的NK水平一般很低。

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