長白豬精原細胞的分離和純化
一、材料和方法
1、實驗動物
長白種系公豬,2月齡,由北京養豬中心葦溝現代化豬場提供。取活體睪丸,立即放入1640營養液中,待分離細胞。
2、主要試劑及材料
膠原酶(CLS,Sigma),胰蛋白酶(Sigma),脫氧核糖核酸酶(DNase,Promega),牛血清白蛋白(BSA,中國醫學科學院天津血液研究所),胎牛血清(FBS,Gibco),RPMI 1640培養基(Gibco,臨用前配制,加鏈霉素及青霉素至終濃度分別為100mg L及80IU ml,調pH至7 3),其他化學試劑均為國產分析純。800ml容量的細胞沉降池(定做)。
實驗用金屬及玻璃器皿用前均清洗干凈并高壓滅菌處理。
3、石蠟切片的制備及染色
新鮮睪丸除去包膜及白膜,切取0 5~1 0cm3左右的小塊,立即置入Bouin固定液中,4℃固定24h。按常規步驟制作石蠟切片,HE染色。
4、單細胞懸液的制備
無菌操作置睪丸于PBS溶液中,小心切開包膜,除去脂肪、附睪及白膜,切取1g左右睪丸組織,用彎剪剪成1mm3大小的碎塊,移入離心管,加5ml含0.5g L膠原酶的PBS,33℃溫育15min,其間不斷震搖并用吸管吹吸數次。靜置4~5min,待組織和細胞沉降管底后,棄上清。
重復上述步驟1次。加入5ml含0.5g L胰蛋白酶和1.0mg LDNase的PBS,33℃,溫育15min,吸管輕輕吹打3min直至滴片鏡檢時視野中全是散在的單細胞及少量小的細胞團。1000r min離心10min,棄上清,并用PBS清洗兩次,細胞沉淀最后重懸在含0. 5%BSA的PBS中,100目篩網過濾,制成單細胞懸液并進行細胞計數。
5、細胞的沉降分離
固定沉降池并保持水平狀態,池底下口周圍加數十粒硅化玻璃珠。10mlPBS及10ml待分離的單細胞懸液按先后從底部下口載入沉降池。用1640培養液分別配制4%和2%的BSA溶液各250ml,同時分別倒入梯度發生器的兩個容器中。
梯度發生器出液口直接用橡膠軟管連接于沉降池的底部尖嘴下口。打開活塞,調整流速,使BSA溶液以15ml min的速度從底部進入沉降池。最終沉降池內的液體從上而下形成2%~4%的BSA連續梯度。
整個沉降系統4℃靜置3h,以使細胞按不同大小在BSA連續梯度介質中通過自然重力沉降而分層。分層后的細胞溶液從沉降池底部下口用自動收集器收集,控制流速為5ml/min,10ml 管作為1份。1000r min離心10min,沉淀細胞,棄上清。
細胞重懸于0.5ml含0 5%BSA的1640培養液中。將各管細胞分別滴片,HE染色,光學顯微鏡下檢測細胞的形態結構特征及均一程度,以確定細胞的類型及純度。合并同類細胞,取1滴細胞懸液,加10μl0.4%臺盼藍,計細胞總數及死亡細胞百分比。
最后調整細胞濃度為106個/ml。滴片,染色。顯微鏡下任選5個視野,計算細胞純度。
6、細胞的貼壁培養及純化
經沉降分離的精原細胞中混有少量支持細胞及間質細胞,將此細胞懸液接種到一次性無菌培養瓶中,于37℃、5%CO2及飽和濕度等條件下培養6~8h,支持細胞和間質細胞貼壁而精原細胞尚未貼壁,輕輕搖動培養瓶使精原細胞充分懸浮,吸出培養液,顯微鏡下再次檢測細胞純度及數量,并計算均值。
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