方案27.12 脂質體介導的瞬時轉染

材料與儀器

L8057-Y10細胞 D-PBSA
培養瓶 培養板 F12 FB培養基 G418(Invitrogen) 選擇性培養基 電穿孔 電穿孔專用杯 電穿孔儀II 電穿孔儀-II配套的效能擴增器-Plus

步驟

表達載體與 DNA 制備：

pSVTKGH，線性化 [ Selden et al.，1986]

此載體含有 SV 40 增強子及單純皰疹病毒胸苷激酶啟動子序列，兩者可啟動人類生 K 激素（hGH ) 基因表達。hGH 可直接分泌到組織培養基上，可通過放射免疫學分析法直接檢測 [ Ravid et al.，1991 ]。

pcDNA3，線性化（Invitrogen )

該表達載體在多克隆位點上游含有人類巨細胞病毒增強子-啟動子，下游含多聚腺苷酸信號及牛生長激素（bGH ) 基因的轉錄終止序列。pcDNA3 載體還含有新霉素抗藥基因，用作篩選穩定表達目的基因的抗性克隆。如本章方法中所述，pcDNA3 也可用作與報告基因載體共轉染的篩選標記。

1. 以 5X105個/ml 的濃度在 75 cm2 培養瓶中接種 L8057-Y10 細胞（F12/FB 培養基）（含谷氨酰胺（2 mmol/L )，青霉素（50 U/ml ) 及鏈霉素（5 μg/ml ) 的 Ham’s F12 , 添加 10% FBS (熱滅活；GIBCO #16140-014)），并于 37°C，5% CO2 孵箱培養細胞。

2. 在對數生長后期，收集細胞，4°C ，380 g 離心 5 min。

3. 用 10ml D-PBSA 洗滌細胞沉淀，4°C，380 g 離心 5 min。

4. 用 5 ml 電穿孔緩沖液洗滌細胞沉淀，用血細胞計數儀計數細胞。

5. 4°C，380 g 再次離心 5 min，收集細胞。

6. 用電穿孔緩沖液將細胞制成密度為 1X106 個/0.8 ml 的細胞懸液。

7. 將 0.8 ml 的細胞移至預冷的電穿孔杯中。

8. 分別加入 50 μg 和 5 μg 線性 pSVTKGH 及線性 pcDNA3 （如果實驗目的是檢測特異基因啟動子-報告基因表達，還需另設無質粒 DNA 的電穿孔細胞，作為陰性對照）

9. 一只手緊握電穿孔杯，另一只手輕彈底部，以混勻 DNA-細胞懸液，將懸液于冰上孵育 10 min。

10. 在 400V /500 μF 條件下轟擊細胞懸液，并記錄時間。

11. 之后，取出電穿孔杯，在冰上擱置 10 min。

12. 將轟擊后的細胞移至盛有 10 ml F12/FB 的離心管中，另取少許培養基沖洗電穿孔杯，移回到離心管，離心，收集細胞。

13. 將細胞于 20 m l F12/FB 中再次懸浮，種到 75 cm2 培養瓶中，于37°C ，5 %CO2 培養箱中孵育，令新霉素抗性基因表達。

14. 24~48 h 后，離心收集細胞，然后用 20 ml 選擇性培養基中再次懸浮細胞。

15. 隨后，需每 2~4 天換液（選擇性培養基），以清除死亡細胞的碎片，并且使抗性細胞生長，篩選過程至少需要兩周。

16. 測定 hGH 在細胞上清液的表達（見 27. 11.5 節）。